Telegram Group Search
Белки, сахара и Рождество

В биохимии много забавных названий, среди них есть и молекулы, название которые можно связать с Рождеством. Естественно, все они из капиталистических стран, потому что советские ученые были гораздо серьезнее (не серьезнее, на самом деле, но не забалуешь с советской властью).

Итак, вот примеры таких молекул:

1. Christmas Factor
В организме человека есть фермент (протеаза), называемый рождественским фактором (Christmas Factor). Для большинства биологов он более известен как фактор IX.

Но вообще, Рождество тут не при чем и он не отвечает за праздничное настроение, а является одним из ферментов системы свертываемости крови. Он активирует другой фактор свертываемости крови - фактор X, что в конечном итоге приводит к образованию тромба.

Он назван в честь ребенка по имени Стивен Кристмас (Stephen Christmas), у которого была обнаружена мутация в факторе IX, что привело к гемофилии B. Тут логично было бы назвать фактор X рождественским фактором (типа X-factor, Christmas Factor). Но фактор X получило название фактора Сьюарта в честь пациента Руфуса Стюарта (Rufus Stuart). Это отдельная история, полная страстей и эмоций.

2. Антибиотик Rudolphomycin
Рудольфомицин - противоопухолевый антибиотик, который вырабатывается актинобактериями рода Actinosporangium.

Но, название «Рудольфомицин» на самом деле не связано с красноносым оленем Санты. Антибиотик был названо в честь Рудольфа, персонажа оперы Пуччини «Богема». Просто автор фанател от оперы и щедро раздал разным метаболитам имена героев оперы.

3. Сахар Rednose
При деградации рудольфомицина был получен новый сахар с аминогруппой, который окрестили «rednose».

С этим названием интересная история, его предложил тот же автор, кто придумал назвать антибиотик рудольфомицином. Перед Рождеством, 21 декабря 1978 он отправил статью, где описал новый сахар и предложил тривиальное название rednose. У редактора, похоже, было хорошее настроение и он все пропустил в печать. Начальство узнало о приколе слишком поздно, автора пропесочили за легкомысленность, но что-то менять было уже поздно. Йо-хо-хо, иногда такие приколы прокатывают!

4. Белковый домен SANTA
У эукариот ДНК большая и для того, чтобы занимала меньше места в ядре и для более тонкой регуляции упакована с помощью белков-гистонов. Но гистоны ограничивают доступ разных ферментов к ДНК, поэтому время от времени нужно все это распутывать.

Во многих белках, которые участвуют в освобождении ДНК от гистонов есть участок, названный SANT. Это домен, который связывает неацетилированный гистон. А рядом с этим доменом выявили другой консервативный регуляторный домен, который назвали SANTA (SANT Associated).

Так что, SANTA не только составляет список ваших проступков, но и участвует в регуляции хроматина.

5. Фактор транскрипции Elf-1
Elf-1 - фактор транскрипции, экспрессируется преимущественно в лимфоидных клетках и может как усиливать, таки и подавлять экспрессию различных генов. Название, конечно, тоже прямо с Рождеством не связано, это сокращение от "E74-Like Factor" - фактор транскрипции похожий на экдизон-индуцибельный транскрипционный фактор дрозофилы необходимый для метаморфоза. Но Санте точно нужны помощники, поэтому включим в список!

Энжойте и всем хо-хо-хо!
Увидемся в следующем сезоне!
600 оттенков кумасси

Длинный пост для всех любителей красить форезные гели!

Что вы знаете о настоящей душности щепетильности в проверке методов окраски гелей? А вот в работе Neuhoff с коллегами (1985) ученые проверили 600 (!) вариантов окрашивания 3 белков в гелях с несколькими концентрациями 2 красителей (Coomassie Brilliant Blue R-250 и G-250) с различными сочетаниями кислот и добавок.

Состав растворов для окраски изобилует всякой экзотикой - тут не только классические метанол и уксусная кислота, но и соляная, хлорная, ТХУ, фосфорная, аскорбиновая, щавелевая и другие кислоты (14 шт., да еще и в разных концентрациях!). Среди добавок - ЭДТА, глицерин, ПЭГ, ДМСО, различные соли (13 шт.!) и другие добавки.

Дотошность авторов проявляется еще и в том, что красители, которые использовались для окрашивания они дополнительно чистили (уверен, никто этого не делает!).

Как же у них получилось провести так много экспов и не сойти с ума? А фишка в том, что красили не гели после фореза, придумали имитацию геля. Вначале тестили кислоты в тонком слое агарозы - делали отверстия и заливали туда растворы белков в агарозе. Поверяли интенсивность окрашивания и фон. А потом отобранные кислоты проверяли на барби-сайз ПААГ. Заливали очень тонкий полиакриламидный гель (0,5 мм) в кассету из предметных стекол, в лунки заливали растворы белков в акриламиде/бис. Потом красили, отмывали и детектировали на самодельном денситометре. Обращаю внимание, что это 1985 год и до появления биорадовских гельдоков оставалось еще 10 лет!

Итак, что полезного можно отметить:
1. При окраске важен pH (а значит и кислота, которая применяется).
При pH <1.5 белки протонированы и хорошо окрашиваются при минимальном фоне, при pH >2 условия окрашивания менее благоприятные и кумасси красит также и гель. При pH <0.5 окраска проходит плохо, потому что краска начинает осаждаться и раствор истощается.
Наилучшие условия для окрашивания обеспечивает промежуточный диапазон pH, при этом краситель находится в коллоидной форме, не выпадает в осадок и доступен для окрашивания (коллоидный кумасси красит лучше обычного, мы это и раньше знали).
2. При низком pH кумасси деградирует и поэтому при приготовлении коллоидного красителя нужно добавлять до 2-6% сульфат аммония, он работает как буфер. В результате pH становится 1.5-2.0, это как раз компромиссное значение, когда и краска не портится и белки хорошо протонированы. Кстати, из-за нестабильности кумасси при низком pH рекомендуют использовать свежий раствор в протоколах, где есть сильные кислоты (хлорная, ТХУ).
3. Для долговременного хранения лучше отмыть гель от кислоты, нейтрализовать в буфере, смыть слой прилипшего коллоидного кумасси 25% метанолом и хранить в 20% растворе сульфата аммония. Сульфат аммония стабилизирует комплекс кумасси с белком и полоски меньше выцветают (если сосуд неплотно закрыт концентрация сульфата аммония будет повышаться и гель скукожится). Если нужно гель сушить, то нужно отмыть от соли и уравновесить в 2-4 % глицерине.
4. Окраска получается лучше, если фиксировать в 12% ТХУ - позволяет убрать интерферирующие соединения (например SDS). Но авторы отмечают, что для разных белков лучше подбирать свой вариант фиксации (кто-нибудь такое делает, интересно?)
5. Добавление сульфата аммония в раствор для окраски позволяет уменьшить окрашивание фона (лучше всего до 10%, выше краска осаждается).
6. R250 тоже может быть в коллоидной форме (для меня это было открытие!). G250 можно получить в коллоидной форме без орг. растворителей, для тех, кому мешает запах спиртов это выход. Но в следующей работе авторы отмечают, что со спиртом быстрее и лучше красит.
7. Гели можно красить ступенчато - вначале прокрасить мажорные полоски, зафиксировать в 20% NH4SO4 , снять на гельдоке, потом удалив NH4SO4 добавить свежую краску и прокрасить слабые полоски
8. Если хотите блеснуть в приличном обществе, можно сказать не «как хотите, так и делайте», а многозначительно указать на латыни “Ad libitum” (по собственному усмотрению).

Титанический труд!
Энжойте и восхищайтесь
На скорую руку покрашенные гели по рецептам из статьи из прошлого поста. Безусловный фаворит - G250 в 2% фосфорной кислоте и 6% сульфате аммония. Твердое второе место - рецепт с G250 в 1,5% соляной кислоте. Потом G250 в 3% щавелевой кислоте и замыкает R250 в стандартной смеси 10% уксусной кислоты и 10% изопропаноле. Фиксировал в 40% этаноле с 10% уксусной кислотой, оставил на ночь. Гели не отмывал, ополоснул водой и 25% этанолом минуту чтобы убрать налипшую краску.

Я был фанатом R250, но похоже вариант с фосфорной кислотой и сульфатом аммония красит гораздо чувствительнее и практически без фона. Осталось проверить другие рецепты.

Интересно получилось, я думал что это олды так заморачивались с ядренными кислотами типа хлорной и ТХУ, когда и уксусная с изопропропанолом норм красит. А вот оно как оказывается, есть в этом свой прикол!
Праздники не прошли даром

Если вы понимаете, о чем это я😁
Новый год прошел, а подарки продолжаются!

Перед Новым годом поучаствовал в конкурсе ТГ-канала АДовый ресёрч на лучшую лабную елку. И сегодня забрал приз - книгу "Сферический конь в вакууме".

На канале Анастасии Куренковой (замдиректора Института регенеративной медицины Сеченовки) можно найти полезные советы юным падаванам, много информации по планированию экспов, применению статистики в работе, про написание статей.
Ну и лабные мемы, само собой. Лайк, шер, репост!
Финалгон вашим мышкам!

Крови у мыши меньше наперстка, поэтому если нужно отобрать по максимуму - то отбирают из сердца или после декапитации (можно выжать до 1 мл).

А если нужно отобрать небольшой объем крови, но быстро и несколько раз, используют способ ампутации кусочка хвоста с выдавливанием 2-3 капелек крови. Так можно получить до 150 мкл крови, а потом повторить пока хвост не кончится.

Мышку и хвост фиксируют, а чтобы кровь лучше шла в модных лабах хвост нагревают ИК-лампой, но можно греть и теплой воде.

А в книге Antibodies in Cell Biology, Methods in Cell Biology Volume 37 (1993) наткнулся еще на один способ повышения кровотока - для этого нужен простой советский …. финалгон! Не очень понятно, как учитывают влияние финалгона на анализ (для проверки антител, думаю, не критично).

Так что в следующий раз, когда будете пользоваться финалгоном, не забудьте порадоваться, что ничего отрезать не надо!
Когда даже советских ученых достает культура аскомицетов
Когда вода из-под крана лучше дистиллята

В замечательной статье Recipes and tools for culture of Escherichia coli из Current Protocols in Molecular Biology (2018) с протоколами приготовления бактериальных питательных сред (статья сама по себе очень полезная!) прочитал об интересном наблюдении про влияние способа получения дистиллята на рост микроорганизмов.

Авторы пишут:

В конце XX - начале XXI века во многих лабораториях дистиллированная вода, подаваемая по металлическим трубкам, была заменена системами, производящими деионизированную воду, которая была очищена от ионов металлов и подавалась по пластиковым трубкам. Следствием такого улучшения качества воды стало появление сообщений о том, что хорошо охарактеризованные штаммы E. coli, которые ранее хорошо росли в минимальной среде, стали расти не так хорошо.


И приводят способ проверки пригодности дистиллята для культивирования на минимальных средах:

При открытии лаборатории в новом месте стоит протестировать рост штаммов E. coli, которые будут использоваться в средах M9 и A, сравнивая рост в средах, приготовленных из доступной дистиллированной воды и из воды, содержащей 100 мл/литр стерильной водопроводной воды (из крана с холодной водой). Если клетки растут лучше в среде, приготовленной на воде с 1/10 водопроводной воды, следует среду M9 и среду A дополнить FeSO4 или продолжить использовать среду, приготовленную из разбавленной холодной водопроводной воды.

Плохо растут клетки? Просто добавь воды!
Как-то раз нужно было срочно наэкспрессировать GFP. А стерильной среды и колб конечно никаких не было.

Но вспомнил статью про культивирование в бутылках из-под колы и решил пойти этим же путем! Колбы - просто хорошо промытые, среда - свеженамешанная. И все сработало, селекция антибиотиками это сила!

P.S. Само собой, лучше когда все стерильное, но если срочно нужно вполне себе вариант.
Если GFP зажигают, значит это кому-то нужно

Для преподавателя практических курсов по молекулярной биологии GFP (зеленый флуоресцентный белок) просто находка. Белок очень стабильный, его легко получить в большом количестве, можно экспрессировать и в бактерияхи в клетках эукариотов. К тому же еще и окрашен, а если подсветить ультрафиолетом еще и светится ярко!

Чем же лучше подсвечивать? Когда начинал применять GFP на практикумах, вначале использовал недорогие УФ фонарики с алиэкспресса, которые питались от одной АА батарей (на 1.5В). Но настоящий кайф случился, когда перешел на мощный фонарик с питанием от аккумулятора типа 18650 (3,7В). Берите Convoy S2 и не пожалеете, флуоресценция огонь просто. Такой фонарь не грех прорекламировать!

Я покупал на алиэкспрессе, но сейчас его можно найти и в озоне и, наверное, в WB.

Энжойте и пусть ваш GFP светит ярко!
В День студентов можно вспомнить как раньше поощряли отличников😁
Педагогические приемы, которые мы потеряли
Настольные книги. Аналитическая химия

Кристиан Г. - Аналитическая химия (2009). Очень полезная книга, особенно для начинающих биологов. В России издается в виде двухтомника, оба тома клевые.

В этой книге описываются основные понятия аналитической химии, автор пишет про качественный и количественный анализ. Что полезно юным падаванам - отличный раздел про то, как правильно готовить растворы, рассчитывать погрешности и калибровать мерную посуду. И что особенно интересно - описание принципа работы основных лабораторных приборов и различных рутинных методов. Думаю это будет особенно полезно биологам (сейчас не знаю, но у нас раньше этому недостаточно уделялось внимание).

Энжойте и просвещайтесь!
Сколько белка на аффинном сорбенте?

При синтезе аффинных сорбентов полезно не только удостовериться, что белок иммобилизовался на шариках, но и определить сколько именно село.

Часто в протоколах приводят метод определениях концентрации лиганда путем измерения его содержания в исходном растворе и в проскоке после иммобилизации. Но мне кажется, так не совсем точно, часть белка остается в порах и уходит при промывке, а там белок разбавленный, толком не измеришь.

Но есть интересный способ определения концентрации иммобилизованного белка методом прямой спектрофотометрии сорбента.

Для этого нужно налить в кювету 100% глицерин, суспендировать небольшое количество промытого и подсушенного на фильтре сорбента с иммобилизованным белком. Перемешивать нужно аккуратно, чтобы не попали пузырьки воздуха. Глицерин предотвращает осаждение частиц и облегчает измерение.

Потом остается измерить поглощение при 280 нм против взвеси сорбента без белка. Вообще, можно еще и калибровочную кривую сделать, добавляя известное количество белка к суспензии исходного сорбента.

В литературе олды пишут еще про полиэтиленгликоголь и другие оптически прозрачные вязкие жидкости (концентрированный раствор сахарозы, этиленгликоль), но я только с глицерином делал.

Энжойте!
Почему-то именно эта фраза запомнилась из сайта Molbiol.ru.

В году так в 2002, гогда у нас в Универе появилась возможность выходить в интернет, я частенько засиживался на этом сайте. Тогда в компьютерном зале библиотеки давали 2 часа на серфинг (да, было такое время, когда инет был труднодоступен!).

А сегодня зашел на сайт, а сайт оказывается больше не работает, такие дела.

Upd. Уф, оказывается работает, похоже у меня на телефоне с настройками что-то не так. Сорри за панику!
2025/02/02 02:17:19
Back to Top
HTML Embed Code: